首页 > 细胞生物学 > 转染试剂 > DOTAP真核细胞转染试剂 DOTAP Transfection Reagent C1510

DOTAP真核细胞转染试剂 DOTAP Transfection Reagent C1510
  • 品  牌:

    普利莱
  • 货  号:

    C1510-0.25
  • 规格ml:

  • 购买数量:

    +
  • 价格:750.00-2300.00
  • 加入购物车 立即购买
  • 产品详情
  • 说明书下载
  • 引用文献

描述:

DOTAP是一种阳离子脂质体,可与DNARNA形成稳定的转染复合物进入细胞,并将核酸释放入细胞内。它以可靠性和高效性著称,是广泛使用的商品化转染试剂。我们的DOTAP真核细胞转染试剂是由DOTAP和中性辅助脂质以特定比例融合制备而成的单层脂质体悬液。这种制备方法增加了脂质体对真核细胞转染的高效性、广谱性、低毒性和可靠性,并使试剂在4°C储存至少稳定12个月。DOTAP可高效转染多细胞,甚至在低浓度血清环境也可工作良好。它属于可被生物降解的脂质体因而细胞毒性明显降低,其转染效率高于Sigma公司的DOTAP单体转染试剂InvitrogenLipofectAMINE相当,但其价格仅相当同类试剂的1/3

转染时只需将稀释的DOTAP试剂与DNA溶液混合并室温放置15分钟即可加入细胞。1ml DOTAP可转染100-500µg DNA50-10035mm培养皿或250-100024孔板细胞。

颜色:

清亮或略呈白色胶体溶液

储存:

4°C储存12个月。切勿冻存。

适用:

DNARNA、寡聚核苷酸转入真核细胞。适用于大多数传代或原代细胞。

效果展示:


DOTAP真核细胞转染试剂(#C1510) LipofectAMINE

图:293细胞于24孔板中生长至75%(confluency),每孔细胞分别用DOTAP真核细胞转染试剂(#C1510)Invitrogen公司的LipofectAMINE转染各0.5 µg pEGFP质粒。转染24小时后观察绿色GFP荧光。

转染步骤:

以生长于24孔板的一个孔内的贴壁细胞为例,使用其它规格培养皿参见表一。

细胞准备:

转染前一天传0.5-2 x 105细胞于24孔板内,加1 ml正常培养基培养。在光镜下观察细胞,当细胞群覆盖培养瓶皿生长表面的85-95%时,为DOTAP转染的最佳时机。这通常需要18-24小时,但依细胞类型和接种量而变。注意:传代时接种过多的细胞,100%长满的细胞的转化效率明显降低

制备转染复合物:

对特定细胞类型来说,应该优化加入DNA (µg)DOTAP (µl)比率和绝对量,参见后面附表。推荐DNADOTAP的初始比例为1:4DNA (µg) DOTAP (µl) 1:21:8

转染实际上是人为造成细胞对外源物质的高摄取状态,因此过量摄入DNA和转染试剂将导致细胞毒性而降低转染效率。与细胞接触的转染混合物中DOTAP 的最大浓度不应超过30 µl/mlDNA浓度应小于5µg/ml。参考表一制备转染复合物,参照表二进行优化。下面的步骤以生长于24孔板的单孔贴壁细胞为例。悬浮细胞转染参见表一后面的说明。

1. 1µg DNA稀释到25µl 无血清无抗生素培养基,混匀。

2. 2-8µl DOTAP 加入到25µl 无血清抗生素培养基,轻轻混匀。

3. 吸取稀释的DNA溶液加入到稀释的DOTAP溶液中,上下吹吸混匀,勿振荡。室温孵育15分钟。

如果按照相反的顺序将稀释的DOTAP溶液与DNA混合,将生成相反类型的DNA转染复合物,有可能会导致转染效率下降。

4. 在此期间用无血清培养基洗涤细胞1-2次,按照表一Step 5加入适宜体积的无血清无抗生素培养基。

5. 加入步骤3获得的转染复合物于培养瓶皿内,轻轻混合与细胞充分接触,开始转染细胞。

6. 二氧化碳孵箱37C孵育细胞4小时。

7. 吸除转染混合物,加入含血清的正常培养基;或直接将含血清培养基加到孔内,继续培养24小时以上。观察细胞,进行下一步实验。或1:10稀释传 代,进行G418筛选。

表一 DNA和转染试剂稀释表

Step 1

Step 2

Step 3

Step 4

Step 5

Culture Vessel

Area cm2

Cell No.

Dilute DNA (µg) to media (µl)

Dilute DOTAP (µl) to media (µl)

DOTAP : DNA mixture

Serum-free

media in well

Total Trans. volume

96-well

0.3

1 ´ 104

0.2 µg in 10 µl

0.5 µl in 10 µl

20 µl

80 µl

100 µl

48-well

1

5 ´ 104

0.5 µg in 20 µl

2 µl in 20 µl

40 µl

100 µl

140 µl

24-well

2

1 ´ 105

1 µg in 50 µl

4 µl in 50 µl

100 µl

200 µl

300 µl

12-well

4

2 ´ 105

2 µg in 100 µl

8 µl in 100 µl

200 µl

400 µl

600 µl

6-well

10

5 ´ 105

4 µg in 250 µl

15 µl in 250 µl

500 µl

1000 µl

1.5 ml

35-mm

10

5 ´ 105

4 µg in 250 µl

15 µl in 250 µl

500 µl

1000 µl

1.5 ml

60-mm

30

1 ´ 106

10 µg in 500 µl

40 µl in 500 µl

1000 µl

2000 µl

3 ml

10-cm

75

4 ´ 106

20 µg in 1000 µl

60 µl in 1000 µl

2000 µl

4000 µl

6 ml

悬浮细胞转染:

悬浮细胞转染与上述步骤类似:(1) 离心收取细胞,用不含血清培养基洗涤2次;将1 x 106 细胞混悬于1ml无血清培养基,加入6孔板内。(2) 按照表一制备转染复合物。将转染复合物加到悬浮细胞的培养基中,轻轻混匀。(3) 二氧化碳孵箱培养4小时。(4) 吸除转染混合物,换常规培养基,继续培养24小时以上。观察细胞或进行下一步实验如G418筛选。

转染优化程序:

对特定类型的细胞,欲获得最大转染效率和最低细胞毒性,应该对加入DNADOTAP的绝对量和比率、浓度等分别进行优化,步骤参见表二。表二是生长于24孔板的单孔细胞为例进行优化操作的。由于可以理解的心理因素,实验人员在转染时常常趋于加入过量的DNA和转染试剂和使用更小的转染复合物体积。从表二可以计算,如果每孔加入1 µg DNA8 µl DOTAP,在200 µl转染混合物中,DNA的浓度将为5µg/mlDOTAP浓度达到40µl/ml,二者的浓度很容易产生细胞毒性;另外转染混合物体积很少时不利于操作也不利于细胞生长,不利于获得最佳转染效率。作为参考,通常最后的转染混合物中DNA浓度应小于5µg/mlDOTAP浓度应<3040 µl/ml。表二给出DNA和转染试剂的量、比率、浓度等指标仅作为参考。

表二 转染优化操作程序

1. 优化DNA:DOTAP 比率,固定加入0.5 µg DNA

DNA : DOTAP  ratio 1:1 1:2 1:3 1:4 1:5 1:6

DNA µg in 25 µl 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5

DOTAP  µl in 25 µl 0.5 1 1.5 2 2.5 3

Add media µl 150 150 150 150 150 150

Final volume µl 200 200 200 200 200 200

Final DNA concentration µg/ml 2.5 2.5 2.5 2.5 2.5 2.5

Final DOTAP  concentration µl/ml 2.5 5 7.5 10 12.5 15

2. 优化DNADOTAP 绝对剂量,固定DNA:DOTAP 比率为1:31:4

DNA : DOTAP  ratio 1:3 1:3 1:3 1:3 1:3

DNA µg in 25 µl 0.2 0.4 0.8 1.2 1.6

DOTAP  µl in 25 µl 0.6 1.2 2.4 3.6 4.8

Add media µl 150 150 150 150 150

Final volume µl 200 200 200 200 200

Final DNA concentration µg/ml 1 2 4 6 8

Final DOTAP  concentration µl/ml 3 6 12 18 24

3. 优化DNADOTAP 浓度,固定DNADOTAP 绝对量和比率为1:31:4

DNA : DOTAP  ratio 1:3 1:3 1:3 1:3 1:3

DNA µg in 25 µl 1 1 1 1 1

DOTAP  µl in 25 µl 3 3 3 3 3

Add media µl 100 150 200 250 300

Final volume µl 150 200 250 300 350

Final DNA concentration µg/ml 6.7 5 4 3.3 2.85

Final DOTAP  concentration µl/ml 20 15 12 10 8.5

说明:

使用高纯水和不含内毒素的质粒DNA、溶液、器皿。常规方法制备的质粒DNA含有大量内毒素,可明显降低降低转染效率。使用内毒素清除剂 (Endotoxin Removal Reagent) #D1501清除内毒素

版权所有 北京普利莱基因技术有限公司 Applygen Technologies Inc.