脂质体转染试剂（可替代Lipo2000）  C1520

描述：

脂质体转染试剂（可替代脂质体转染试剂）是一种新型的阳离子脂质体转染试剂。适合于将核酸(DNA和RNA)转染入真核细胞，具有低细胞毒性；对多种类型的细胞和培养板都具有高转染效率；转染时血清的存在不影响转染效率的优点。

适用范围：

贴壁细胞和悬浮细胞（哺乳动物细胞系）的转染。

储存：

2-4℃保存一年。（避免冷冻）

质粒DNA的转染

对大多数细胞来说，DNA(µg)与脂质体转染试剂的比例为1:2~1:3。转染时高的细胞密度可以得到高的转染效率和表达水平，并能减少细胞毒性。

1. 以24孔板为例

贴壁细胞：转染前一天，用500 µl不含抗生素的培养基接种0.5～2×10⁵细胞，使之第二天能达到70-90%汇合。

悬浮细胞：用500 µl不含抗生素的培养基接种4～8×10⁵细胞即可。

2. 对每个转染样品，进行以下操作

a. 在Eppendorf管里分别加入50 µl Opti-MEM I Reclipped Serum Medium和0.8 µg DNA轻柔混匀，制成DNA稀释液。

b. 在另一个Eppendorf管里分别加入50µl Opti-MEMI Reclipped Serum Medium和2.0 µl 脂质体转染试剂(注意用前先混匀)，轻柔混匀，制 成脂质体转染试剂 稀释液，室温静置5分钟。

c. 将DNA稀释液和脂质体转染试剂稀释液混合，轻柔混匀，室温静置20分钟， 形成DNA-脂质体转染试剂复合物。DNA-脂质体转染试剂复合物在室温下可稳定存在6小时。

3. 将DNA-脂质体转染试剂复合物加入到接种好的细胞中，将培养板轻轻地前后摇动，使复合物分散均匀。

4. 在37℃ CO2培养箱中培养4-6小时后更换培养基,继续培养18～48小时。

5. 如果要筛选稳定细胞株，则在转染24小时后将细胞按照1:10或更高的比例接种到新鲜培养基中，第二天加入选择性培养基进行筛选。

质粒DNA转染的优化 为达到最高的转染效率和降低细胞毒性的影响，可以对DNA和脂质体转染试剂的比例以及细胞密度进行优化，一般在1:0.5~1:5的范围内优化DNA(µg)和脂质体转染试剂(µl)的比例.

1) 转染试剂必须与细胞匹配，没有万能的转染试剂。

2) 高纯度的DNA或RNA才能获得较高的转染效率！用于转染的质粒DNA必须无蛋白质，无内毒素，无RNA和其他化学物质的污染，OD260/280比值应在1.8以上。血清中含有大量的蛋

白质，在转染过程中，带负电的蛋白质可能干扰阳离子脂质体对核酸的吸附，影响转染效率。另外，使用脂质体等转染试剂时，由于含血清转染会将血清中的蛋白带入细胞，引发细胞

毒性，导致转染效率降低，故用无血清培养基转染效果更好！

3) 转染时细胞必须处于良好生长状态，转染时细胞的密度一般铺板率在达到70—80%最好（此时细胞处于对数生长期）；

4) 如果是贴壁细胞，应保证贴壁在12～24小时在进行转染，否则细胞转染容易脱壁。对于贴壁生长细胞，一般要求在转染前一日，必须应用胰酶处理成单细胞悬液，重新接种于培养

皿或瓶，转染当日的细胞密度以70-90%（贴壁细胞）或2×10⁶-4×10⁶细胞/ml（悬浮细胞）为宜，最好在转染前4h换一次新鲜培养液。

5) 转染时注意脂质体和质粒的用量，过量的话对细胞毒性大也容易失败。

6) 转染作用6小时一定记得要换含血清的培养基。

7) 培养基以及洗涤细胞和稀释用的培养基要无血清、无双抗。

8) 转染试剂对个别细胞可能有一定毒性，在转染过程由于提高细胞的通透性因而不能在培养答基中添加抗生素。

9) 培养基中的血清：在开始准备DNA和转染试剂稀释液时要使用无血清的培养基，因为血清会影响复合物的形成。其实，只要在DNA-转染试剂复合物形成时不含血清，在转染过程中

是可以使用血清的。

10) 培养基中的抗生素：抗生素是影响转染的培养基添加物。这些抗生素一般对于真核细胞无毒，但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性，使抗生素可以进入细胞。这降低了细胞的

活性，导致转染效率降低。

11) 一般在转染24-48h，靶基因即在细胞内表达。根据不同的实验目的，24-48h后即可进行靶基因表达的检测实验。

12) 如若建立稳定的细胞系，则可对靶细胞进行筛选，根据不同基因载体中所含有的抗性标志选用相应的药物，常用的真核表达基因载体的标志物有潮霉素和新霉素等。

13) 建议设置阳性对照和阴性对照。

脂质体转染试剂用于不同细胞转染时用量参考（以96孔板为例）